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常见问题

客户最关心的实际问答

买的二氧化硅做色谱填料或者增稠用，粒径和比表面积一般控制在什么范围才靠谱？怎么简单判断合格？
先明确用途再定指标：色谱载体常用5–10 μm、孔径8–30 nm；增稠用比表面积一般150–300 m²/g。验收看三点：粒径分布D90偏差≤10%，比表面积用BET法复测，误差超5%要复检；灼烧减量通常≤2%。入库前做小试，观察分散性和沉降速度，异常批次留样。具体数值以实际应用和厂家COA为准。
二甲基膦酸做阻燃或有机合成中间体，纯度不够老是影响反应收率，怎么判断和提纯？
先测纯度和水分：工业级一般≥98%，水分偏高会明显拖低收率。判断看核磁磷谱和滴定双指标，偏差大则复检。提纯可减压蒸馏，收集合适馏分，避免高温久煮导致分解。储存要密封避潮，开桶后尽快用完。若反应仍不稳，先排查溶剂含水与投料比，具体工艺参数以实际小试为准。
正十六烷做溶剂或标准品，冬天容易凝固、批次间闪点对不上，买的时候怎么选才不出问题？
结论：按用途选纯度并锁定凝固点和闪点指标。正十六烷凝固点约18 ℃，冬季运输和存放需保温或加热，否则会结蜡堵管。作为标准品一般选≥99%，用气相色谱复测纯度；作为溶剂看馏程和闪点，闪点通常约135 ℃，批次波动大要留样比对。验收查COA并测密度、折光率，数值以实际到货检测为准。
用溶壁酶做原生质体制备，细胞老是破不彻底或者破过头，酶解条件到底怎么控？
结论：酶解要控温度、pH、时间和渗透压。常用温度28–32 ℃，pH 5.8–6.5，渗透压用0.6–0.8 mol/L甘露醇维持。先做时间梯度，每15分钟镜检，以大部分细胞变圆、轻压即破为准，避免过夜酶解。酶液现配现用，0.22 μm过滤除菌。不同菌株差异大，具体用量和时长以实际预实验为准。
提取的色素老是被氧化褪色或者测出来含量偏低，问题出在哪、怎么补救？
结论：多是光、热、氧和pH导致降解。操作避光、低温，提取液可加0.1%抗坏血酸或BHT抗氧化，控制pH在稳定区间。测含量前先做全波长扫描定最大吸收波长，标准曲线现做，样品尽快上机，避免久放。若已褪色，建议重新取样并做加标回收验证方法可靠性。具体抗氧化剂用量以实际体系为准。
过氧化物酶活性测出来忽高忽低、重复性差，实验怎么改才稳定？
结论：先固定反应体系和操作节奏。常用愈创木酚或ABTS法，pH 6.0–7.0、温度25 ℃或30 ℃水浴，底物和过氧化氢现配。酶液稀释到吸光度每分钟变化0.05–0.3为宜，读数间隔固定15–30秒。每批做空白和对照，所有样品同批同人操作。若仍波动，检查酶提取是否低温并加保护剂，具体参数以预实验为准。